Un hombre de 22 años fue ingresado en este hospital debido a dolor y eritema que se extendía rápidamente en la mano izquierda.
El paciente se encontraba bien hasta el día del ingreso, cuando se despertó con dolor e inflamación de la mano izquierda que afectaba la articulación interfalángica distal del segundo dedo y la articulación interfalángica proximal del cuarto dedo. Durante un período de varias horas, el dolor progresó y comenzaron a formarse ampollas. Comenzó a tener dolor con el movimiento del dedo índice y del cuarto dedo, y las ampollas se volvieron de color púrpura oscuro; estos cambios motivaron al paciente a acudir al servicio de urgencias de este hospital.
En el servicio de urgencias, el paciente refirió dolor en la mano izquierda que empeoraba con el movimiento del segundo y cuarto dedo. No había letargo, fatiga, dolor de cabeza, disnea, tos o dolor en otros lugares. El paciente no tenía antecedentes médicos destacables y había estado bien hasta el día de la presentación.
En el examen, el paciente parecía estar bien. La temperatura era de 38,6 ° C, la presión arterial de 126/63 mm Hg, la frecuencia cardíaca de 101 latidos por minuto, la frecuencia respiratoria de 18 respiraciones por minuto y la saturación de oxígeno del 100% mientras respiraba aire ambiente. Había dos ampollas dolorosas y violáceas en la cara dorsal de la mano izquierda, una en la articulación interfalángica distal del segundo dedo y otra en la articulación interfalángica proximal del cuarto dedo, cada una de las cuales medía 7 mm por 3 mm ( Figura 1 ). Además, había un eritema estriado no doloroso que se extendía por la cara dorsal de la mano izquierda, la cara volar del antebrazo izquierdo y la cara medial de la parte superior del brazo izquierdo hacia la axila. No había adenopatías axilares.
Figura 1. Fotografías clínicas.
Las fotografías de la mano izquierda del paciente muestran ampollas violáceas en la articulación interfalángica proximal del cuarto dedo (Panel A) y la articulación interfalángica distal del segundo dedo (Panel B), cada uno mide 7 mm por 3 mm (Panel C).
En un examen más detenido del brazo izquierdo, los compartimentos de tejidos blandos estaban blandos y comprimibles, sin evidencia de crepitación. La flexión y extensión de los dedos estaban intactas pero limitadas por el dolor y la hinchazón en el segundo y cuarto dedo. Los resultados de las exploraciones motoras y sensitivas fueron normales. La mano estaba tibia. El pulso radial era palpable y el relleno capilar era rápido. El resto del examen físico general fue anodino. Se obtuvo muestra de sangre para cultivo, hemograma completo y panel metabólico. Los resultados iniciales de las pruebas de laboratorio se muestran en la Tabla 1 .
Tabla 1. Datos de laboratorio.
La tomografía computarizada (TC) de la mano y el brazo izquierdos, realizada después de la administración de material de contraste intravenoso, reveló una inflamación focal de los tejidos blandos que recubre la articulación interfalángica distal del segundo dedo y la articulación interfalángica proximal del cuarto dedo. en la cara dorsal de la mano izquierda ( Figura 2 ). No hubo evidencia de erosión ósea, reacción perióstica, fractura, derrame articular, acumulación de líquido o aire subcutáneo. El antebrazo izquierdo tenía un aspecto normal en las imágenes.
Figura 2. Estudios de imagen.
Se realizó tomografía computarizada de la mano izquierda después de la administración de contraste intravenoso. Imágenes sagitales centradas en el segundo y el cuarto dedo (Paneles A y B, respectivamente) muestran inflamación focal de los tejidos blandos (flechas) que recubren la segunda articulación interfalángica distal y la cuarta articulación interfalángica proximal en el lado dorsal de la mano. Imágenes coronales centradas en la segunda articulación interfalángica distal y cuarta proximal (Paneles C y D, respectivamente) no muestran evidencia de erosión ósea, reacción perióstica, fractura, derrame articular, o colección de líquidos. Una reconstrucción tridimensional de la mano izquierda (Panel E) también muestra hinchazón focal de tejidos blandos (flechas) que recubre la segunda articulación interfalángica distal y la cuarta articulación interfalángica proximal. Una imagen tridimensional de los huesos (Panel F) no muestra características anormales.
Mientras el paciente estaba en el departamento de emergencias, se obtuvieron antecedentes adicionales. El paciente no estaba tomando ningún medicamento y no tenía alergias conocidas a los medicamentos. Se había graduado recientemente de la universidad y estaba buscando empleo. Vivía con sus padres en un área suburbana de Nueva Inglaterra. No había antecedentes de viajes recientes o contactos por enfermedad. Rara vez bebía alcohol y no fumaba cigarrillos ni usaba drogas ilícitas. No había antecedentes familiares notables.
El paciente había comenzado recientemente a practicar la taxidermia como un nuevo pasatiempo. Cuatro días antes de la presentación, recibió de un amigo un cuero de ciervo congelado, que comenzó a preparar para el curtido. Cuando recibió la piel de venado por primera vez, raspó la piel y el pelaje para quitar numerosas garrapatas. El día antes de la presentación, amasó la piel con las manos y masajeó una mezcla de cerebro de venado y agua del grifo que se había preparado el día anterior y se dejó reposar durante la noche. Mientras el paciente trabajaba con la piel del animal, no usó ropa protectora ni guantes. Su madre había ayudado en parte del proceso, pero ella estaba bien.
Se le administró líquido intravenoso, ceftriaxona y vancomicina, e ingresó al hospital. Médicos del servicio de ortopedia, dermatología y enfermedades infecciosas evaluaron al paciente. Se realizó una prueba de diagnóstico.
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL
Al desarrollar el diagnóstico diferencial en este caso, es útil considerar varios puntos clave sobre la historia médica y social de este paciente, sus exposiciones relevantes y su presentación clínica. El paciente era un adulto joven sano que no había estado tomando ningún medicamento, por lo que no se esperaba que las condiciones médicas coexistentes influyeran. Vivía en un área suburbana de Nueva Inglaterra y no tenía factores de riesgo relacionados con viajes, contactos por enfermedad, empleo o comportamientos relacionados con la salud. El aspecto convincente de su historial de exposición es que 4 días antes de la admisión, había raspado una piel de ciervo congelada para quitar las garrapatas sin el uso de guantes. También había amasado la piel y masajeado con una mezcla de cerebro de venado y agua del grifo el día anterior a la admisión.
El paciente había estado bien hasta el día de la presentación, cuando se desarrolló un proceso localmente progresivo que involucraba su mano y brazo izquierdos. El proceso se caracterizó por dolor, hinchazón y ampollas en la mano, junto con un eritema estriado que se había extendido por el brazo. Por lo demás, el examen físico fue notable solo por fiebre y taquicardia leve, y el paciente parecía estar bien. La evaluación de laboratorio fue en gran parte normal, excepto por un recuento de neutrófilos ligeramente elevado. Una tomografía computarizada mostró una inflamación de los tejidos blandos que afectaba la cara dorsal de la mano izquierda, pero sin evidencia de un proceso más profundo. Sobre la base de la información proporcionada en la descripción del caso y las fotografías clínicas, describiría la enfermedad del paciente como una celulitis aguda con ampollas hemorrágicas y eritema estriado que se desarrolló después de la exposición a una piel de ciervo y un posible trauma menor asociado con un raspado vigoroso. Dada la apariencia del paciente, el curso temporal de la enfermedad y la ausencia de signos y síntomas que sugieran una afección sistémica preexistente o concurrente, es probable que la causa sea una infección local. Aunque la exposición al cerebro de venado es intrigante, no existen organismos específicamente asociados con este tejido que causen celulitis, y el período de incubación habría sido bastante corto. es probable que la causa sea una infección local. Aunque la exposición al cerebro de venado es intrigante, no existen organismos específicamente asociados con este tejido que causen celulitis, y el período de incubación habría sido bastante corto.
INFECCIONES DE PIEL Y TEJIDOS BLANDOS
Antes de discutir los patógenos infecciosos asociados con el ciervo y los cueros de ciervo, debemos considerar los patógenos humanos típicos que causan infecciones de la piel y los tejidos blandos. El estreptococo beta-hemolítico, especialmente el estreptococo del grupo A ( Streptococcus pyogenes ), es la causa más común de celulitis y pueden aparecer ampollas y linfangitis. Staphylococcus aureus puede causar celulitis, pero generalmente se desarrolla una infección purulenta de la piel y los tejidos blandos.
Es apropiado proporcionar cobertura de antibióticos dirigida a las causas típicas de celulitis mientras se realiza una evaluación de organismos más inusuales. Aunque existe una larga lista de zoonosis que están potencialmente asociadas a la exposición a ciervos, las infecciones más relevantes a considerar son aquellas que se manifiestan con lesiones cutáneas, aquellas que tienen un período de incubación relativamente corto y aquellas que pueden transmitirse durante el contacto con un cuero de ciervo congelado.
PESTE
¿Podría este paciente tener una infección por Yersinia pestis , conocida como peste? Esta infección tiene múltiples vías de transmisión posibles, incluida la manipulación de tejido animal infectado. La transmisión por esta vía puede resultar en peste bubónica o septicémica. Aunque Y. pestis se puede encontrar en ciervos, se asocia más comúnmente con otros animales. Además, desde 1970, todos los casos de peste en los EE. UU, se han producido en los estados del oeste, excepto un caso adquirido en el laboratorio. 1La peste bubónica tiene un período de incubación de 2 a 6 días, que es compatible con la evolución temporal en este caso, y puede resultar en pápulas, úlceras y escaras en los sitios de inoculación por picadura de pulga. Sin embargo, no tenemos motivos para sospechar que este paciente haya estado expuesto a pulgas y los hallazgos cutáneos no son compatibles con los bubones o con las lesiones que se desarrollan en los sitios de inoculación por mordedura. Por lo tanto, es poco probable que la peste explique la presentación de este paciente.
BRUCELOSIS
La brucelosis puede ser causada por múltiples especies de brucella. Brucella abortus está bien descrita en ciervos y presenta un riesgo de infección en los cazadores. 2 La brucelosis puede desarrollarse después del contacto de la piel con tejido animal infectado. El período de incubación habitual es de 2 a 4 semanas, pero es posible que la enfermedad se manifieste en 5 días. 3 Aunque pueden aparecer hallazgos cutáneos, son relativamente poco frecuentes y típicamente difusos. Las erupciones asociadas con la brucelosis pueden ser papulonodulares o maculopapulares o pueden parecerse al eritema nudoso. En este caso, ni la evolución temporal ni los hallazgos cutáneos se ajustan bien al diagnóstico de brucelosis.
TULAREMIA
La tularemia es causada por la bacteria Francisella tularensis . Al igual que la peste, la tularemia tiene múltiples vías de transmisión posibles, incluido el contacto con tejido animal infectado. F. tularensis se ha descrito en ciervos, pero la infección en humanos suele estar asociada con el contacto con otros animales. De hecho, la tularemia a veces se denomina fiebre del conejo. 4 En pacientes que tienen la forma ulceroglandular de tularemia, hay una úlcera cutánea, junto con un ganglio linfático inflamado; estas manifestaciones no coinciden con los hallazgos cutáneos en este caso. Además, los pacientes con tularemia suelen tener una enfermedad sistémica, mientras que este paciente parecía estar bien, con pocos signos y síntomas sistémicos además de la fiebre.
ORF
Orf, también conocido como ectima contagioso, debe considerarse en este paciente. El virus orf pertenece al género parapoxvirus. Los seres humanos se infectan después del contacto directo con animales o con equipos contaminados. Aunque la mayoría de los casos son el resultado del contacto con ovejas o cabras, el virus se ha encontrado en ciervos y se ha descrito la transmisión a un ser humano a partir de un cadáver de ciervo. 5 Los seres humanos se han infectado con menos frecuencia con otros parapoxvirus después de la exposición a animales, y se ha descrito la transmisión de nuevos parapoxvirus a los cazadores de ciervos. 6Después de un período de incubación de 3 a 7 días, el orf inicialmente se manifiesta como una pequeña pápula y luego progresa a través de etapas que involucran el desarrollo de una ampolla o pústula hemorrágica. Puede haber fiebre baja y linfangitis. Sin embargo, en este caso, dada la cantidad de tiempo transcurrido desde la primera exposición a la piel de venado, se esperaría ver solo una pápula en el momento de la presentación si la enfermedad del paciente se debiera a orf.
ÁNTRAX
Un diagnóstico de ántrax cutáneo, que es causado por Bacillus anthracis , encaja con varias características de este caso, particularmente la exposición a la piel de venado. 7 De los varios tipos de ántrax, el ántrax cutáneo es el más común y menos letal. La infección suele ser el resultado de la manipulación de productos animales infectados. Las esporas se pueden encontrar en el suelo y es más probable que los animales con pezuñas, incluidos los ciervos, alberguen el organismo. El ántrax es poco común en los Estados Unidos y hay una vacuna disponible para su uso en el ganado. El carbunco cutáneo se manifiesta de 1 a 7 días después de la exposición, inicialmente con una pápula indolora, que progresa a una vesícula y luego se erosiona hasta convertirse en una úlcera indolora con escara. 8A menudo se presenta un edema extenso debido a la producción de la toxina del edema, y pueden aparecer linfangitis y síntomas sistémicos. Un sello distintivo del ántrax cutáneo es que es indoloro; este paciente tenía un dolor marcado y progresivo. Por tanto, debemos seguir buscando un diagnóstico que sea coherente con todas las características de este caso.
INFECCIÓN POR ERYSIPELOTHRIX RHUSIOPATHIAE
Erysipelothrix rhusiopathiae puede infectar a los seres humanos después de la exposición a animales. Cuando la infección ocurre en humanos, la presentación más común es una enfermedad cutánea localizada conocida como erisipeloide. Cuando la infección se presenta en cerdos, puede causar una enfermedad conocida como erisipela porcina, que se caracteriza por fiebre, artritis y anomalías cutáneas. La terminología es confusa porque la erisipela humana es una celulitis superficial que generalmente es causada por estreptococos del grupo A. 9
En los seres humanos, la mayoría de las lesiones erisipeloides ocurren en los dedos después de la exposición ocupacional a animales. La infección es más común en quienes manipulan pescado o cangrejos frescos o congelados; Los trabajadores de los mataderos, los carniceros y los agricultores también corren peligro. 9 E. rhusiopathiae se ha aislado de múltiples animales y está muy extendido en el medio ambiente. Además de infectar peces, mariscos y cerdos, se puede encontrar en ganado, caballos, ovejas, pavos, pollos, gatos, perros y otros animales. 10 En la literatura, hay al menos un informe de erisipeloide que ocurre después de que el paciente sacrificara un ciervo. 11
La erisipeloide se manifiesta como celulitis de 2 a 7 días después de la exposición a E. rhusiopathiae . Son típicas las lesiones violáceas y bien definidas y pueden desarrollarse vesículas. Se cree que el dolor temprano y la hinchazón localizada sin edema con fóvea son manifestaciones clínicas características. Puede ocurrir linfangitis y linfadenopatía regional. Los síntomas sistémicos son relativamente infrecuentes con erisipeloide localizado, pero puede aparecer fiebre. 12 En algunos casos, E. rhusiopathiae puede causar un síndrome infeccioso distinto del erisipeloide, como una forma cutánea difusa, bacteriemia con posible siembra de sitios distantes o endocarditis.Sobre la base de la historia de exposición de este paciente y su presentación clínica de fiebre, dolor marcado y lesiones ampollosas características, sospecho que el diagnóstico más probable en este caso es erisipeloide debido a una infección por E. rhusiopathiae .
E. rhusiopathiae es una bacteria grampositiva no esporulante con forma de bastoncillo. En el laboratorio de microbiología clínica, puede visualizarse en la tinción de Gram y recuperarse en cultivo bacteriano, aunque puede ser necesaria una muestra de tejido profundo. Los hemocultivos rara vez son positivos en pacientes con erisipeloide.
Impresión clínica
Un médico: yo estaba en el equipo de consultores de este paciente. Inicialmente estábamos preocupados por la posibilidad de una infección cutánea por B. anthracis , dada la exposición a la piel de venado. Pensamos que este diagnóstico era poco probable porque el paciente no tenía escara y tenía un grado sustancial de dolor. No obstante, por precaución, notificamos al laboratorio de microbiología que la infección por B. anthracis era un posible diagnóstico para garantizar que se utilizarían las prácticas de bioseguridad adecuadas en el manejo de las muestras.
Debido a que el paciente tenía ampollas y estrías linfangíticas, nuestro diagnóstico de trabajo fue la infección por un patógeno bacteriano típico como S. pyogenes o S. aureus . Sin embargo, el historial de exposición era convincente y también nos preocupaban los patógenos bacterianos zoonóticos, incluidos E. rhusiopathiae y F. tularensis . Dada la exposición al agua del grifo en la mezcla de cerebro de venado, también consideramos la inoculación con Pseudomonas aeruginosa o Vibrio vulnificus. En el momento de la evaluación inicial, pensamos que no teníamos suficiente información para apuntar a un patógeno específico y, por lo tanto, iniciamos la terapia con antibióticos de amplio espectro con cefepima, doxiciclina y ciprofloxacina mientras estaban pendientes los resultados del estudio adicional.
DIAGNÓSTICO DE SOSPECHA CLINICO
ERISIPELOIDE DEBIDO A LA INFECCIÓN POR ERYSIPELOTHRIX RHUSIOPATHIAE .
Discusión patológica
Un día después del inicio de los síntomas, se obtuvieron dos hisopos superficiales y una muestra de biopsia por punción de la superficie dorsal de los dedos índice y anular izquierdos y se sometieron a cultivos microbiológicos de rutina; la muestra de biopsia también se envió para evaluación patológica. Debido a que el diagnóstico diferencial clínico inicial incluyó ántrax cutáneo, todas las muestras se manipularon dentro de una cabina de bioseguridad de acuerdo con las recomendaciones de los Centros para el Control y la Prevención de Enfermedades. 13,14 Se envió un hisopo al Laboratorio de Salud Pública del Estado de Massachusetts. Análisis de reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real realizado para la detección de B. anthracis y B. cereus biovar anthracisácidos nucleicos fue negativo. La tinción de Gram directa reveló neutrófilos raros pero ningún organismo. Los cultivos se realizaron en un medio líquido (caldo de tioglicolato), así como en medios sólidos de rutina, incluidos agar sangre de oveja, agar chocolate y agar MacConkey.
El examen microscópico de la muestra de biopsia por sacabocados reveló formación de ampollas y dilatación linfática ( Figura 3A ) asociada con necrosis epidérmica con microvesículas intraepidérmicas y edema subepidérmico subyacente ( Figura 3B, 3C y 3D ). Había un infiltrado celular mixto que tenía predominio perianexial y perivascular pero que se extendía desde la dermis reticular hasta el tejido subcutáneo ( Figura 3E y 3F ). El infiltrado tenía áreas focales de necrosis y estaba compuesto por abundantes histiocitos y linfocitos, con neutrófilos ocasionales ( Figura 3G y 3H). Estas características histológicas sugerían una dermatosis infecciosa, pero no eran específicas de ella. Las tinciones histoquímicas especiales para microorganismos, incluida una tinción de Brown-Hopps, tinción de plata Steiner, tinción de ácido periódico-Schiff y tinción de plata con metenamina de Gomori, fueron negativas.
Figura 3. Análisis microscópico de muestras de piel.
La tinción con hematoxilina y eosina de una muestra de biopsia por sacabocados de piel de la superficie dorsal del cuarto dedo izquierdo muestra formación de ampollas (Panel A, flecha), dilatación linfática (Panel A, punta de flecha) y necrosis epidérmica (Panel B, flecha). A mayor aumento, la epidermis muestra microvesículas intraepidérmicas (Panel C) y edema subepidérmico subyacente con formación temprana de ampollas (Panel D). Hay un infiltrado celular perianexial y perivascular dérmico (Panel E) que se extiende hacia el tejido adiposo de la hipodermis (Panel F). El infiltrado tiene áreas focales de necrosis con edema dérmico asociado, y es predominantemente linfohistiocítico, con neutrófilos ocasionales. (Panel G). La tinción inmunohistoquímica muestra abundantes células que expresan CD68, un marcador de origen histiocítico (Panel H, en marrón).
Se detectó crecimiento bacteriano en el cultivo de caldo de tioglicolato el día 2. Las colonias bacterianas crecieron en todo el medio pero se observaron principalmente en las partes superior y media del tubo ( Figura 4A ); esta característica indica la presencia de un anaerobio facultativo. La tinción de Gram del caldo reveló bacterias largas, grampositivas, no esporulantes, no ramificadas, en forma de varilla con características filamentosas y extremos redondeados ( Figura 4B ). Las pruebas bioquímicas revelaron que el aislado era catalasa negativo y producía sulfuro de hidrógeno cuando se incubaba en agar hierro con triple azúcar ( Figura 4C ). El aislado se subcultivó en agar sangre de carnero y, al día siguiente de la incubación, se observaron colonias con características microbiológicas puntiformes, transparentes y alfa-hemolíticas (Figura 4D ). Se realizó difusión en disco, un ensayo basado en cultivo para determinar semicuantitativamente la susceptibilidad antimicrobiana de las bacterias. El aislado se inoculó en agar sólido en presencia de un disco de papel que contenía vancomicina (disco de 30 μg) y, después de la incubación durante la noche, el tamaño de la zona de inhibición reveló resistencia a la vancomicina ( Figura 4E ). Un panel de prueba bioquímica que combinó pruebas de fermentación de carbohidratos y ensayos de detección directa de enzimas ( Figura 4F ) y espectrometría de masas MALDI-TOF (ionización por desorción láser asistida por matriz-tiempo de vuelo) confirmó que el patógeno era E. rhusiopathiae . Los cultivos de la muestra de sangre que se había obtenido el primer día de ingreso fueron negativos.
Figura 4. Cultivo microbiológico de muestras de piel.
Se inoculó un hisopo superficial de una lesión cutánea en caldo de tioglicolato y se incubó en una atmósfera de 3 a 5% de dióxido de carbono entre 35 y 37 ° C. El panel A muestra el crecimiento bacteriano el día 2 en todo el medio, pero principalmente en las partes superior y media del tubo (tubo derecho), una característica clásica de las bacterias anaerobias facultativas. En el panel B, la tinción de Gram de las colonias muestra bacterias grampositivas en forma de bastoncillo con filamentosas no esporulantes, no ramificadas características. El panel C muestra que el organismo produjo sulfuro de hidrógeno después de la inoculación en un azúcar triple. La producción de sulfuro de hidrógeno está indicada por la presencia de sulfuro ferroso (mostrado como precipitado negro), que se produce cuando reacciona el sulfato de amonio ferroso (presente en el agar hierro triple azúcar) con gas sulfuro de hidrógeno. El panel D muestra que el organismo desarrolló pequeñas colonias alfa-hemolíticas después del subcultivo e incubación durante la noche en agar sangre de carnero de rutina. El panel E muestra colonias bacterianas contiguas a un disco de vancomicina de 30 μg, un hallazgo que indica resistencia a los antimicrobianos. En el Panel F, un panel de prueba bioquímica confirma que el patógeno es Erysipelothrix rhusiopathiae.
La infección zoonótica por E. rhusiopathiae se limita comúnmente a formas cutáneas leves. 15 La identificación bacteriana puede representar un desafío para el laboratorio de microbiología clínica, porque se han informado al menos dos morfotipos diferentes en colonias y en tinción de Gram. 16 Sin embargo, la identificación precisa de los patógenos es crítica para asegurar el tratamiento antimicrobiano eficaz, ya que las especies Erysipelothrix son intrínsecamente resistentes a la vancomicina y muchos aislados también pueden ser resistentes a los aminoglucósidos y sulfonamidas. 17
DIAGNÓSTICO PATOLÓGICO
INFECCIÓN CUTÁNEA POR ERYSIPELOTHRIX RHUSIOPATHIAE .
SEGUIMIENTO
Después del inicio de la terapia antimicrobiana, la condición del paciente mejoró durante la hospitalización y fue dado de alta el día 6. Tenía mayor movilidad del segundo y cuarto dedo, recesión de las rayas linfangíticas y no tuvo más fiebre. Una vez recibidos los resultados del cultivo, se cambió el régimen antimicrobiano. El agente preferido para el tratamiento de la infección por E. rhusiopathiae es la penicilina o una cefalosporina; el organismo es intrínsecamente resistente a la vancomicina. 18Decidimos iniciar el tratamiento con amoxicilina-ácido clavulánico para facilitar la dosificación. La amoxicilina-ácido clavulánico se toma dos veces al día y proporciona una cobertura más amplia que la amoxicilina sola, que se toma tres veces al día y tiene una cobertura anaeróbica limitada. Otra opción hubiera sido la penicilina, que se toma cuatro veces al día. La terapia con antibióticos se administró durante un total de 14 días, dada la gravedad de la infección en el momento de la presentación. En su último día de terapia, el paciente fue visto en la clínica de cirugía ortopédica para que le quitaran las suturas de la biopsia con sacabocados. En ese momento, sus lesiones casi habían sanado. El rango completo de movimiento había regresado a su mano y dedos, y la infección parecía haberse resuelto.
DIAGNOSTICO FINAL
INFECCIÓN POR ERYSIPELOTHRIX RHUSIOPATHIAE .
Traducción de:
A 22-Year-Old Man with Pain and Erythema of the Left Hand
Lisa G. Winston, M.D., Marisa L. Winkler, M.D., Ph.D., Arvin Kheterpal, M.D., and Julian A. Villalba, M.D.
https://www.nejm.org/doi/full/10.1056/NEJMcpc2107357?query=featured_home
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